Title:
Nachweisverfahren für Mycobacterium avium ssp. paratuberculosis
Kind Code:
A1
Abstract:

Die vorliegende Anmeldung betrifft ein Verfahren zum spezifischen Nachweis und ggf. zur Quantifizierung von Mycobacterium avium ssp. paratuberculosis (MAP) in einer Probe eines Individuums. Gemäß dem erfindungsgemäßen Verfahren wird hierzu der Nachweis des Vorhandenseins der IS900-Region in einer Probe mit Hilfe einer Nukleinsäureamplifikation und spezifischen Oligonukleotiden durchgeführt. In einem weiteren Aspekt wird vorliegend ein Test-Kit zum spezifischen Nachweis von MAP in einer Probe mittels Amplikationsverfahren bereit gestellt. Schließlich werden spezifische Oligonukleotide offenbart, die zum spezifischen Nachweis von MAP geeignet sind.



Inventors:
Czerny, Claus-Peter, Prof. Dr. Dr. (37136, Waake, DE)
Münster, Pia (37083, Göttingen, DE)
Application Number:
DE102012103730A
Publication Date:
11/14/2013
Filing Date:
04/27/2012
Assignee:
Georg-August-Universität Göttingen Stiftung Öffentlichen Rechts, 37073 (DE)
International Classes:
Domestic Patent References:
DE102007015775A1N/A2008-10-09
DE3854767T2N/A1996-09-05
Foreign References:
EP20091182008-12-31
Other References:
Appl Environ Microbiol. 2004 Aug;70(8):4561-8
BMC Vet Res. 2012 May 2;8:49
Int J Food Microbiol. 2005 May 1;101(1):93-104 (Abstract)
J Microbiol Methods. 2005 Dec;63(3):305-17 (Abstract)
J Microbiol Methods. 2007 Apr;69(1):154-60 (Abstract)
PLoS One. 2007 Nov 28;2(11):e1229
Vet Microbiol. 2007 Nov 15;125(1-2):36-48 (Abstract)
Vet Microbiol. 2011 Dec 29;154(1-2):197-201
Attorney, Agent or Firm:
Gramm, Lins & Partner GbR, 30173, Hannover, DE
Claims:
1. Verfahren zum spezifischen Nachweis und ggf. zur Quantifizierung von Mycobacterium avium ssp. paratuberculosis (MAP) in einer Probe eines Individuums umfassend den Schritt:
? Nachweis der IS900 Region von einem MAP-Genom in einer Probe eines Individuums mit Hilfe einer Nukleins?ureamplifikation, wobei diese Amplifikation mit spezifischen Oligonukleotiden bestehend aus jeweils mindestens sechs Nukleotiden der Sequenzen gem?? Seq. ID Nr. 1 und Seq. ID Nr. 2 durchgef?hrt wird
wobei der Nachweis der IS900-Region mindestens eines MAP-Genoms das Vorhandensein von MAP im Individuum erlaubt.

2. Verfahren zum spezifischen Nachweis von MAP gem?? Anspruch 1, wobei der Nachweis mittels Polymerase-Ketten-Reaktion (PCR), insbesondere Echtzeit-PCR, bevorzugt als quantitative PCR, erfolgt.

3. Verfahren nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, dass insbesondere bei der PCR, der Nachweis der IS900-Region die Verwendung einer Nukleins?uresonde umfasst, die an die IS900-Region des MAP-Genoms und/oder an einer Nukleins?ure komplement?r zu der IS900-Region des MAP-Genoms, hybridisiert.

4. Verfahren nach einem der Anspr?che 1 bis 3, wobei der Nachweis mittels quantitativer Echtzeit-PCR unter Verwendung einer Sonde aus einem Oligonukleotid mit mindestens 10 Nukleotiden gem?? Seq. ID Nr. 3 erfolgt.

5. Verfahren nach einem der vorherigen Anspr?che, dadurch gekennzeichnet, dass die Probe eine aus Kot-, Milch-, Blut-, Sperma-, Gewebe-, Organ- und Umweltproben ist.

6. Verfahren nach einem der vorherigen Anspr?che, dadurch gekennzeichnet, dass die Probe von Wiederk?uern, insbesondere Rinder, Schafe und Ziegen oder von Menschen stammt.

7. Test-Kit zum spezifischen Nachweis von MAP in einer Probe mittels Amplikationsverfahren, insbesondere mittels PCR, dadurch gekennzeichnet, dass das Test-Kit Oligonukleotid zur Amplifizierung von der MAP IS900-Region mit jeweils mindestens 6 Nukleotiden gem?? Seq. ID Nr. 1 und 2 umfasst.

8. Test-Kit gem?? Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet, dass es weiterhin eine Sonde mit mindestens 10 Nukleotiden gem?? Seq. ID Nr. 3 umfasst.

9. Test-Kit gem?? Anspruch 7 oder 8 dadurch gekennzeichnet, dass es weiterhin Mittel zur Gewinnung der genomischen DNA aus Proben, insbesondere Kot-, Milch-, Blut-, Sperma-, Organ-, Gewebe- und Umweltproben aufweist und/oder Mittel zur Durchf?hrung einer PCR, insbesondere Echtzeit-PCR.

10. Verwendung eines Test-Kits gem?? einem der Anspr?che 7 bis 9 zum spezifischen Nachweis von IS900 von MAP in Proben, insbesondere Kot-, Milch-, Blut-, Sperma-, Gewebe-, Organ- und Umweltproben in einem Individuum.

11. Oligonukleotide zum spezifischen Nachweis und, gegebenenfalls, zur Quantifizierung von MAP in einer Probe eines Individuums, dadurch gekennzeichnet, dass die Oligonukleotide folgende Nukleotidsequenzen aufweisen: jeweils mindestens 6 Nukleotide der Seq. ID Nr. 1, mindestens 6 Nukleotide der Seq. ID Nr. 2, und, gegebenenfalls, mindestens 10 Nukleotide der Seq. ID Nr. 3.

12. Verwendung der Oligonukleotide gem?? Anspruch 10 zum spezifischen Nachweis und, gegebenenfalls, zur Quantifizierung, von Mycobacterium avium ssp. paratuberculosis (MAP) insbesondere mittels quantitativer Echtzeit-PCR.

Description:

Die vorliegende Anmeldung betrifft ein Verfahren zum spezifischen Nachweis und ggf. zur Quantifizierung von Mycobacterium avium ssp. paratuberculosis (MAP) in einer Probe eines Individuums. Gem?? dem erfindungsgem??en Verfahren wird hierzu der Nachweis des Vorhandenseins der IS900-Region in einer Probe mit Hilfe einer Nukleins?ureamplifikation und spezifischen Oligonukleotiden durchgef?hrt. In einem weiteren Aspekt wird vorliegend ein Test-Kit zum spezifischen Nachweis von MAP in einer Probe mittels Amplikationsverfahren bereitgestellt. Schlie?lich werden spezifische Oligonukleotide offenbart, die zum spezifischen Nachweis von MAP geeignet sind.

Stand der Technik

Mycobacterium avium ist eine Mykobakterienart, die verschiedenste Wirte hat. Mycobacterium avium kann einerseits die Gefl?geltuberkulose verursachen, andererseits auch bei Menschen und anderen S?ugetieren als Krankheitserreger auftreten. Eine Spezies hiervon ist Mycobacterium avium ssp. paratuberculosis (MAP), ein obligat pathogenes Bakterium der Gattung Mycobacterium. MAP gilt aus Ausl?ser der Paratuberkulose (Johne?sche Krankheit), einer Erkrankung die insbesondere bei Wiederk?uern auftritt. Auch die Subspezies MAP konnte neben den Wiederk?uern und dem Menschen in weiteren Tierarten, insbesondere in Wildtieren detektiert werden, u.a. in Hasen, V?geln, Wildkatzen, Waschb?ren und Ratten. Es wird weiterhin eine m?gliche Beteiligung dieses Erregers bei dem Krankheitsbild ?Morbus Crohn? des Menschen diskutiert.

Der Erreger MAP ist seit Anfang des 19. Jahrhunderts bekannt als Verursacher der Paratuberkulose. Bei der Paratuberkulose handelt es sich um eine chronische Darmerkrankung, die ?ber Wochen hinweg zu einer st?ndigen Abmagerung f?hrt. Im Endstadium verl?uft diese Erkrankung t?dlich. ?berwiegend werden adulte Hauswiederk?uer, wie Rinder, Schafe und Ziegen, aber auch Wildwiederk?uer und Zootiere befallen. ?blicherweise erfolgt die ?bertragung des Erregers vor allem auf neugeborene K?lber und K?lber bis zum Alter von 6 Monaten. Die Infektion findet dabei meist schleichend und unerkannt auf f?kal-oralem Wege statt und auch die Kolostralmilch erkrankter K?he kann den Erreger enthalten. Nach einer mehrj?hrigen Latenzzeit mit unregelm??iger und nicht kontrollierbarer Erregerausscheidung tritt die Krankheit typischerweise erst bei ?lteren K?hen auf. Derzeit gibt es keine Therapie. Impfstoffe zeigten in der Vergangenheit zweifelhafte Erfolge, so dass ein Einsatz in Deutschland zurzeit nicht erfolgt. H?ufig ist der Zukauf von subklinischen bzw. persistent infizierten Tieren f?r die Neuinfektionen innerhalb einer Herde verantwortlich. Gerade die klinisch unauff?lligen Tr?ger sowie unerkannte Ausscheider sind die wichtigste Ursache f?r dauerhaft fortbestehende Bestandsinfektionen. Gerade durch die weite Verbreitung der Paratuberkulose sowie wirtschaftliche Sch?den sind verbesserte Diagnostikmethoden und die Entwicklung von Bek?mpfungsprogrammen aktuell gefragt. Die Paratuberkulose ist in Deutschland nach ?78a Abs. 2 Tierseuchengesetz meldepflichtig.

Die Diagnostik von Paratuberkulose stellt einen wesentlichen Baustein bei der Bek?mpfung und bei der Fr?herkennung der Paratuberkulose dar. Es gibt bereits verschiedene Testverfahren und Diagnoseverfahren, die z.B. auf Antik?rper-basierten Tests beruhen. Ein Problem der kommerziell erh?ltlichen Tests ist allerdings die mangelnde Sensitivit?t und die mangelnde Spezifit?t. Antik?rper-basierte Tests sind weiterhin ungeeignet, da serologisch negative Ausscheider aufgrund der mangelnden Sensitivit?t dieser Tests in den Herden verbleiben und so die Krankheit weiterhin verbreiten k?nnen.

Um zuk?nftig ein wirksames Eradikationsprogramm durchf?hren zu k?nnen, sind verl?ssliche Erregernachweise notwendig. Molekularbiologische Verfahren, insbesondere Verfahren auf Basis einer Nukleins?ureamplifikation sind vielfach diskutiert worden. Insbesondere molekularbiologische Verfahren auf Basis der Polymerase-Ketten-Reaktion (PCR) werden gro?e Chancen zugerechnet. Die PCR stellt eine schnelle und zuverl?ssige Methode dar, um MAP-DNA in Verdachtsproben zu best?tigen. Als besonders geeignete Bereiche des MAP-Genoms wurden hierbei die Insertionssequenz IS900, aber auch Bereiche von ISMav2, hspX und F57 identifiziert. Es kristallisiert sich insbesondere das Insertionselement IS900 als ein geeigneter Bereich zur molekularen Diagnostik, insbesondere mit Hilfe von PCR-Verfahren heraus.

IS900 ist ein 1451 bp gro?es Fragment, das 17 Kopien innerhalb des Genoms des Referenzstammes MAP-K10 aufweist. Aufgrund dieser hohen Kopienzahl kann eine h?here Sensitivit?t des Nachweisverfahrens erreicht werden und macht die IS900 zu einer geeigneten Targetregion. Konventionelle und Echtzeit-PCR (real-time PCR) zum Nachweis von MAP basierend auf die Zielsequenz IS900 sind beschrieben.

So enth?lt die DE 10 2007 015 775 A1 zum spezifischen Nachweis von MAP geeignete Oligonukleotide. Weiterhin offenbart dieses Dokument entsprechende Verfahren und Test-Kits zum Nachweis von MAP. Aus der EP 2 009 118 A2 ist ebenfalls ein Verfahren zum Nachweis und zur Quantifizierung von MAP auf Basis von IS900 und F57 spezifischen Primern bekannt.

Allerdings leiden die dort beschriebenen Verfahren nach wie vor an einer mangelnden Sensitivit?t bei hoher Spezifit?t.

Erforderlich ist aber, infizierte Individuen mit hoher Sensitivit?t und gro?er Spezifit?t nachzuweisen, um ein entsprechendes Eradikationsprogramm durchzuf?hren. Dieses Verfahren soll insbesondere auch in biologischen Proben, wie Kot, Organ, Milch und Gewebeproben durchf?hrbar sein ohne vorherige umfangreiche Anzucht, welche bis zu 16 Wochen ben?tigt, oder Aufbereitungsschritte durchf?hren zu m?ssen.

Au?erdem soll dieses Verfahren geeignet sein, eine entsprechende Automatisierung zu erlauben. Die im Stand der Technik beschrieben Verfahren erlauben dieses nicht.

Beschreibung der Erfindung

In einem ersten Aspekt richtet sich die vorliegende Anmeldung auf ein Verfahren zum spezifischen Nachweis ggf. zur Quantifizierung von Mycobacterium avium ssp. paratuberculosis (MAP) in einer Probe eines Individuums. Das erfindungsgem??e Verfahren umfasst dabei den Schritt des Nachweises der IS900-Region eines MAP-Genoms in einer Probe mit Hilfe einer Nukleins?ureamplifikation, wobei diese Amplifikation mit den spezifischen Oligonukleotiden bestehend aus jeweils mindestens 6 Nukleotiden der Sequenzen gem?? Seq. ID Nr. 1 und Seq. ID Nr. 2 durchgef?hrt werden und ein Nachweis der IS900-Region mindestens eines MAP-Genoms das Vorhandensein von MAP in der Probe aufzeigen.

Es wurde vorliegend herausgefunden, dass die spezifischen Oligonukleotide, wie sie hier eingesetzt werden, n?mlich die Oligonukleotide, die mindestens 6 Nukleotiden der Sequenzen gem?? Seq. ID Nr. 1 und Seq. ID Nr. 2 aufweisen, eine hervorragende Spezifit?t und Sensitivit?t gegen?ber MAP in diagnostischen Verfahren auf Basis einer Nukleins?ureamplifikation erlauben.

Es ist dabei bevorzugt, dass die Oligonukleotide gem?? Seq. ID Nr. 1 und/oder Seq. ID Nr. 2 mindestens 6, wie 7, 8, 9 und insbesondere mindestens 10 Nukleotide dieser beiden Sequenzen aufweisen. Bevorzugter ist, dass zumindest eines der spezifischen Oligonukleotide gem?? Seq. ID Nr. 1 und/oder Seq. ID Nr. 2 mindestens 11, 12, 13, 14, 15, insbesondere mindestens 16, 17, 18, 19 oder s?mtliche Nukleotide der genannten Sequenzen aufweist. Es ist klar, dass auch Ausf?hrungsformen enthalten sind, bei denen ein Oligonukleotid z.B. mindestens 8 Nukleotide der Sequenz gem?? Seq. ID Nr. 1 und mindestens 10 Nukleotide der Sequenz gem?? Seq. ID Nr. 2 aufweist. Im Umfang dieser Erfindung ist jede Variation enthalten.

Das Verfahren zur Nukleins?ureamplifikation ist bevorzugt eine Polymerase-Ketten-Reaktion (PCR). Bei dieser kann es sich insbesondere um eine Echtzeit-PCR(real-time PCR)-handeln. Die PCR, z.B. in Form einer Echtzeit-PCR ist insbesondere eine quantitative PCR.

Im Gegensatz zu bekannten Verfahren, die ebenfalls auf Basis einer PCR beruhen, ist es vorliegend mit den erfindungsgem??en Oligonukleotiden als Primerpaar m?glich, in einer Amplifikationsrunde aussagekr?ftige Ergebnisse zu erhalten. Bisher bekannte Verfahren beruhen h?ufig auf den sogenannten ?nested?- oder ?semi-nested-PCR?-Verfahren. Hierbei erfolgt die Amplifikation in zwei Schritten, d.h. das Verfahren dauert l?nger und ist teurer als ein Einschrittverfahren. Weitere Vorteile der Echtzeit-PCR sind die M?glichkeit einer Quantifizierung der MAP-DNA, eine schnelle Durchf?hrung mit geringer Kontaminationsgefahr sowie die Gew?hrleistung einer hohen Sensitivit?t und Spezifit?t.

Es ist insbesondere bevorzugt, dass bei der Nukleins?ureamplifikation, wie der PCR insbesondere der Echtzeit-PCR und besonders bevorzugt bei der quantitativen PCR, der Nachweis der IS900-Region mit Hilfe einer Nukleins?uresonde erfolgt. Diese Nukleins?uresonde ist ein ?blicherweise mit einem Label oder Marker markiertes Oligonukleotid, die an die IS900-Region des MAP-Genoms und/oder an einer Nukleins?ure komplement?r zu der IS900-Region des MAP-Genoms, hybridisiert.

Unter Hybridisierung wird vorliegend verstanden, dass ein Nukleins?uremolek?l, wie die Nukleins?uresonde, sich an mindestens einem anderen Nukleins?uremolek?l, hier einem amplifizierten Genabschnitt, anlagert, wobei im Anlagerungsbereich die beiden einzelnen Str?nge der Nukleins?uren im Wesentlich vollst?ndig komplement?r sind. Es k?nnen sich auch triple Helices zwischen der Nukleins?uresonde und vorliegender doppelstr?ngiger DNA ausbilden. Dem Fachmann sind bekannte Hybridisierungsverfahren bekannt. Insbesondere sind die hybridisierenden Bereiche wenigstens zu 70 % komplement?r, wie mindestens 75 %, insbesondere mindestens 80 %, bevorzugt mindestens 90 %, wie mindestens 95 %, insbesondere mindestens 99 %, wie vollst?ndig komplement?r.

In einer bevorzugten Ausf?hrungsform ist die Nukleins?ure ein Oligonukleotide mit mindestens 10 Nukleotiden gem?? Seq. ID Nr. 3. Es ist bevorzugt, dass die Sonde eine ist mit mindestens 12, 13, 14, insbesondere 15, 16, 17, 18 Nukleotiden gem?? Seq. ID Nr. 3, bevorzugt 19 Nukleotide, wie die Sequenz Seq. ID Nr. 3 selbst mit 20 Nukleotiden.

Die Sonde ist dabei in ?blicher Art und Weise mit einem Label oder Marker markiert, die eine einfache Detektion mit bekannten Verfahren erlaubt. Dem Fachmann sind ?bliche Label oder Marker bekannt, wie Fluoreszenzfarbstoffe, z.B. FAM (5 oder 6 Carboxyfluorescein), VIC, NID, Fluorescein, Fluoresceinisothiocyanat (FITC), 6-carboxy-2?, 4?, 7?, 4, 7-Hexachlorofluorescein (HEX), Cyaninfarbstoffe, wie Cy3, Cy5 usw., Rhodamin-Farbstoffe, Phenanthridenfarbstoffe und weitere dem Fachmann wohlbekannte Farbstoffe. Besonders geeignet f?r die Sonden-Detektion sind FAM und der Black-Hole-Quencher-1 (BHQ1).

Dem Fachmann sind f?r das jeweilige Protokoll der Nukleins?ureamplifikation, wie der PCR, der Echtzeit-PCR und insbesondere f?r quantitative PCR, die geeigneten Farbstoffe in Verbindung mit den geeigneten Amplifikationssystemen bekannt.

Bei der Echtzeit-PCR werden alternativ inaktive, z.B. gequenchte, Fluoreszenzfarbstoffe beigemischt, die durch die DNA-Produktion aktiviert werden. ?bliche Farbstoffe, die mit der synthetisierten doppelstr?ngigen DNA interkalieren k?nnen, sind z.B. Ethidiumbromid oder SYBR Green. Bei der Nutzung des TaqMan Systems zur Nukleins?ureamplifikation sind die Nukleins?uresonden solche, die durch Hydrolyse nachweisbar sind, zum Beispiel durch Bestimmung der entsprechenden Fluoreszenz. Dem Fachmann sind weitere geeignete Systeme auf Basis und z.B. LightCycler-Sonden, FRET-Sonden, Molecular Beacons oder Skorpion Primer bekannt. Das Nukleins?ureamplifikationverfahren ist insbesondere bevorzugt eine quantitative Echtzeit-PCR mit Primern gem?? Seq. ID Nr. 1 und Seq. ID Nr. 2 und einer Nukleins?uresonde gem?? Seq. ID Nr. 3.

Bei dem erfindungsgem??en Verfahren und auch in den erfindungsgem??en Test-Kits k?nnen weiterhin entsprechende Kontrollen vorliegen. Diese Kontrollen beinhalten Kontrollen f?r die Amplifikation und/oder Kontrollen f?r die Aufreinigung. Diese Kontrollen k?nnen z.B. in der Probe selbst vorliegen oder in einen parallelen Ansatz durchgef?hrt werden. So kann beispielhaft die Sonde bei der Echtzeit-PCR mit einem gequenchten Farbstoff, wie FAM, ausgestattet sein. Gleichzeitig ist die Sonde mit einem zweiten Marker, der in einem anderen Bereich, z.B. in einem anderem Bereich Licht emittiert, nachgewiesen werden kann als der gequenchte Farbstoff und der nicht gequencht ist, ausgestattet. Dadurch ist eine Kontrolle der PCR m?glich. Weiterhin kann in der Probe oder parallel dazu eine Positivkontrolle amplifiziert werden, wie ?-Aktin. Der Nachweis hiervon erfolgt mit einem Marker, der zu den ersten und zweiten Marker unterschiedlich ist, z.B. ein Cy5 Farbstoff. Dadurch ist eine Kontrolle der Reaktion m?glich und erlaubt eine Verbesserung der Aussagekraft des Verfahrens. Zur Amplifikationskontrolle, welche den inhibitorischen Effekt einer klinischen Probe ausschlie?t, kann eine zweite Fluoreszenzfarbe (z.B. HEX, gemessen bei 533?580 nm) f?r die Sonde integriert werden.

Zur Quantifizierung k?nnen in Parallelans?tzen weiterhin entsprechende Positivkontrollen f?r MAP in vorbestimmten Konzentrationen eingesetzt werden. Dem Fachmann sind die entsprechenden Versuchsans?tze bekannt.

Die Nukleins?ureamplifikation erfolgt bevorzugt aus einer Probe eines Individuums. Die der Nukleins?ureamplifikation unterworfene Probe kann dabei eine Probe sein, die aus einer Vielzahl von gepoolten Proben besteht, um so ein effektives Testen auf MAP zu erm?glichen. ?blicherweise kann eine gepoolte Probe eine Mischung aus z.B. 10 bis 20 einzelnen Proben unterschiedlicher Individuen sein. Alternativ handelt es sich bei der Probe um die Probe eines einzelnen Individuums.

Unter dem Ausdruck Individuum, wird vorliegend insbesondere verstanden, ein Individuum ausgew?hlt aus Wiederk?uern, insbesondere Rinder, Schafe und Ziegen aber auch wilde Wiederk?uer, wie Zebra usw. Hierbei kann es sich z.B. um Zootiere handeln. Unter dem Ausdruck Individuum fallen weiterhin Menschen. So kann das Verfahren z.B. eingesetzt werden, um bei einem Menschen eine Infektion mit MAP zu testen, z.B. im Zusammenhang mit der Diagnose von Morbus Crohn.

sBei der Probe selbst kann es sich um eine ausgew?hlte Kot-, Milch-, Blut-, Sperma-, Gewebe- oder Organ-Probe handeln. Alternativ kann es sich auch um Umweltproben handeln, z.B. Proben auf pflanzlicher Basis oder Proben aus Bio-gasanlagen und Gew?ssern.

Bevorzugt handelt es sich bei der Probe um eine Kotprobe oder eine Milchprobe eines Wiederk?uers, insbesondere eines Rindes.

Die Probe kann dabei erfindungsgem?? mit geeigneten Verfahren aufgearbeitet werden. ?bliche Verfahren schlie?en eine Aufarbeitung der Probe ein. Dem Fachmann sind geeignete Verfahren bekannt. Insbesondere kann die Aufarbeitung mit Hilfe bekannter DNA-Extraktionsverfahren erfolgen. Diese schlie?en die Verwendung bekannter Kits auf Basis von Tensiden und Salzen ein. Weiterhin sind mechanische DNA-Extraktionsverfahren m?glich, einschlie?lich einer Aufarbeitung mittels Homogenisatoren etc. Insbesondere sind Verfahren geeignet, die den Einsatz von Tensiden zur Extraktion einschlie?en.

In einem weiteren Aspekt richtet sich die vorliegende Erfindung auf Test-Kits zum spezifischen Nachweis von MAP in einer Probe mittels Amplifikationverfahren, insbesondere mittels PCR. Diese Test-Kits umfassen Oligonukleotide zur Amplifizierung der MAP IS900-Region mit jeweils mindestens 6 Nukleotiden gem?? Seq. ID Nr. 1 und 2. Bevorzugt ist dieses Test-Kit eines f?r die PCR-Nukleins?ureamplifikation insbesondere eines f?r die Echtzeit-PCR. In einer besonders bevorzugten Ausf?hrungsform handelt es sich bei dem Test-Kit um eines geeignet f?r die quantitative PCR, wie die quantitative Echtzeit-PCR. In einer Ausf?hrungsform umfasst das Test-Kit weiterhin ein Oligonukleotid mit mindestens 10 Nukleotiden der Nukleins?uresonde gem?? Seq. ID Nr. 3. Dieses Test-Kit ist insbesondere geeignet zur quantitativen Analyse auf Basis von z.B. der TaqMan PCR. Das erfindungsgem??e Test-Kit kann weiterhin weitere Bestandteile zur Durchf?hrung der Nukleins?ureamplifikation, insbesondere die notwendigen Enzyme, Nukleotide und Puffer aufweisen. Weiterhin bevorzugt kann eine Positivkontrolle mit beigef?gt sein und/oder Anweisungen zur Durchf?hrung des erfindungsgem??en Verfahrens.

Schlie?lich kann das Test-Kit entsprechende Reagenzien und Mittel enthalten, die zur Gewinnung der genomischen DNA aus Proben insbesondere Kot-, Milch-, Blut-, Sperma-, Organ-, Gewebe- und Umweltproben geeignet sind, und/oder Mittel zur Durchf?hrung der PCR, insbesondere Echtzeit-PCR.

Dem Fachmann sind geeignete Reagenzien und Mittel bekannt.

Die Anmeldung richtet sich schlie?lich auf Oligonukleotide zum spezifischen Nachweis und, optional, zur Quantifizierung von MAP in einer Probe eines Individuums, wobei mindestens 6 Nukleotide der Sequenz Seq. ID Nr. 1 und mindestens 6 Nukleotide der Sequenz ID Nr. 2 vorhanden sind und, ggf., mindestens 10 Nukleotide der Seq. ID Nr. 3.

Diese Oligonukleotide sind insbesondere in der Verwendung zum spezifischen Nachweis und optional zur Quantifizierung von MAP insbesondere mittels quantitativer Echtzeit-PCR geeignet. Die erfindungsgem??en Oligonukleotide sind solche, wie oben ausgef?hrt.

Die Erfindung wird im Folgenden mit Hilfe von Beispielen n?her erl?utert, ohne auf sie beschr?nkt zu sein.

Ausf?hrungsbeispiel:

F?r die ?berpr?fung der Spezifit?t der erfindungsgem??en Primer (MAP523-542f/MAP661-642r) und die TaqMan Sonde (MAP617-636p) gem?? Tabelle 1 wurden 14 Mykobakterien Arten sowie 14 nicht-Mykobakterien Arten, die h?ufig in der Landwirtschaft und der Umwelt vorkommen, sowohl in der klassischen als auch in der Echtzeit-PCR getestet und die Spezifit?t best?tigt (Tabelle 2). 1 zeigt die Position der erfindungsgem??en Primer zu den Primern aus dem Stand der Technik. Tabelle 1: Nukleins?uresequenzen der Primer und TaqMan Sonde zur Detektion von MAP-DNA in der Echtzeit-PCR.

Primer/SondeSequenz (5?-3?)Lokalisation/Seq.ID.No.*MAP523-542fTACCGCGGCGAAGGCAAGAC523-542/1MAP661-642rCGGAACGTCGGCTGGTCAGG661-642/2MAP617-636pATGACATCGCAGTCGAGCTG617-636/3
* Nach der publizierten IS900 Sequenz MAP K-10 (GenBank: AF416985), Seq. ID No. 4. Tabelle 2: Verwendete Referenzst?mme zum Spezifit?ts-Nachweis der TaqMan Echtzeit-PCR. Bakterien-Spezies Name/QuelleMykobakterien-Arten M. avium ssp. paratuberculosis ATCC 19698M. avium ssp. avium ATCC 15769M. avium ssp. avium ATCC 19421M. avium ssp. avium ATCC 25291M. avium ssp. silvaticum ATCC 49884M. bovis ATCC 27289M. fortuitum ATCC 6841M. gordonae ATCC 14470M. intracellulare ATCC 13950M. kansasii ATCC 12478M. marinum ATCC 927M. phlei ATCC 354M. scrofulaceum ATCC 19981M. smegmatis ATCC 19420Andere Bakterien-ArtenCampylobacter jejuni ATCC 33560Clostridium perfringens CattleClostridium sordelli CattleEscherichia coli 0101:K28 CattleEscherichia coli 0149:K91 SwineEscherichia coli 0157:H7 ATCC 700927Enterococcus faecalis ATCC 19433Enterococcus hirae ATCC 10541Rhodococcus equi ATCC 25694Salmonella cholerasuis CattleSalmonella thyphimurium CattleStaphylococcus aureus CattleStreptococcus dysgalactiae Cattle Streptococcus uberis Cattle

Die verwendete DNA der Referenzst?mme wurde aus Kulturen mit Hilfe des QIAamp Blood Kit (Quiagen, Hilden, Germany) extrahiert und mittels Nano-Drop? (ND-1000 Spectrophotometer, peQLab Biotechnologie GmbH, Erlangen) gemessen. Die DNA wurde auf 1 ng/?l eingestellt. Durch den Einsatz publizierter PCR-Verfahren wurde die speziesspezifische DNA der Referenzst?mme best?tigt. Als Negativkontrolle diente steriles, destilliertes Wasser.

In allen F?llen waren auf dem Agarosegel die zu erwartenden PCR-Produkte der jeweiligen Genus-spezifischen PCR deutlich zu erkennen.

Zur Abkl?rung der Spezifit?t wurden die beiden Primer (MAP523-542f/MAP661-642r) auf Kreuzreaktivit?t mit anderen Bakterienspezies in der klassischen PCR getestet (2). F?r den Ansatz der PCR wurden ?Ready-To-GoTM? PCR ?Beads? (Amersham Pharmacia Biotech Europe, Freiburg) verwendet. Reaktionsansatz und -bedingungen der PCR waren wie folgt:

Ready-To-GoTM PCR Beads 1 Bead Aqua dest. 21 ?l Primer MAP-for (10 pmol/?l) 1 ?l Primer MAP-rev (10 pmol/?l) 1 ?l Template 2 ?l

Der PCR ist ein Denaturierungsschritt bei 95?C f?r 4 min vorgeschaltet.

Denaturierung: 95 ?C, 30 sec Annealing: 58?70 ?C, 30 sec Elongation: 72 ?C, 60 sec

Den Abschluss der PCR bildet die Verl?ngerung der Elongation bei 72?C f?r 7 min.

Die zu erwartenden 139 bp gro?en PCR-Produkte waren auf dem Agarosegel deutlich und ausschlie?lich bei der MAP-DNA-Probe (ATCC 19698) zu erkennen. Amplifikate im 139 bp Bereich wurden bei anderen Bakterienspezies (n = 14) nicht beobachtet. Daher k?nnen die eingesetzten Primer (MAP523-542f/MAP661-642r) als MAP-spezifisch angesehen werden.

Zus?tzlich wurde die Spezifit?t mittels Sequenzierung des 139 bp langen Produktes best?tigt. Dazu wurden die PCR-Produkte in den Plasmidvektor pCR? 2.1-TOPO? (Invitrogen, Groningen, Niederlande) kloniert, in E. coli Bakterien vermehrt und mit dem Wizard? Plus SV Minipreps Purification System (Promega, Mannheim) aufgereinigt. Die Nukleotidsequenzen wurden mit Hilfe von MegAlign mit der Sequenz des MAP K-10 Referenzstammes (Accession No. AE16958) verglichen. Insgesamt wurden 15 Klone in beiden Richtungen sequenziert und ausgewertet. Die IS900-Sequenzen der Amplifikate stimmten mit der publizierten bovinen MAP K-10 Sequenz zu 100% ?berein.

Nachdem die Spezifit?t der Primer (MAP523-542f/MAP661-642r) in der klassischen PCR anhand von Referenzst?mmen (n = 14) ?berpr?ft wurde, sollte die Spezifit?t der Sonde (MAP617-636p) in Kombination mit den Primern in der Echtzeit-PCR best?tigt werden. Als Negativkontrolle diente steriles, destilliertes Wasser. Reaktionsansatz sowie Reaktionsbedingungen der Echtzeit-PCR mit TaqMan Sonde auf dem LightCyclerTM 480 (Roche Diagnostics, Mannheim) waren wie folgt:

Light CyclerTM DNA 480 Master 10 ?l Primer MAP-for (10 pmol/?l) 0,5 ?l Primer MAP-rev (10 pmol/?l) 0,5 ?l Sonde (10 pmol/?l) 1 ?l Aqua dest. 3 ?l Template 5 ?l
95 ?C 10 min95 ?C
60 ?C
15 sec
30 sec
45 Zyklen
72 ?C 35 sec

3 zeigt die Detektion von MAP mittels TaqMan Sonde (MAP617-636p). Die MAP-Spezifit?t der Primer (MAP523-542f/MAP661-642r) und der TaqMan Sonde (MAP617-636p) konnte hinreichend belegt werden. Ein Signal war nur beim Referenzstamm MAP (ATCC 19698) sichtbar. Die Reaktion der anderen Bakterienspezies war vergleichbar mit der Negativkontrolle. Zur weiteren Abkl?rung der Spezifit?t wurden die Primer (MAP523-542f/MAP661-642r) sowie die TaqMan Sonde (MAP617-636p) auf Kreuzreaktivit?t mit anderen Mykobakterien-Spezies (n = 13) getestet.

Die verwendete DNA der Mykobakterien-Referenzst?mme wurde aus Kulturen wie oben beschrieben aufgereinigt und mittels Nano-Drop? gemessen. Die DNA wurde auf eine Konzentration von 1 ng/?l eingestellt. Durch den Einsatz eines publizierten ?multiplex?-PCR-Verfahrens (Shin et al., 2010, Journal of Clinical Microbiology 48 (11), 4057?4062) wurde die speziesspezifische DNA der Referenzst?mme best?tigt. Als Negativkontrolle diente steriles, destilliertes Wasser. Reaktionsansatz und Reaktionsbedingungen waren wie in der Literatur angegeben.

Die zu erwartenden PCR-Produkte der jeweiligen Mykobakterien-Arten waren auf dem Agarosegel deutlich zu erkennen. Zur weiteren Spezifit?ts-Abkl?rung der Primer (MAP523-542f/MAP661-642r) wurden diese auf Kreuzreaktivit?t mit anderen Mykobakterien-Arten in der klassischen PCR getestet (4).

Die zu erwartenden 139 bp gro?en PCR-Produkte waren auf dem Agarosegel deutlich ausschlie?lich bei MAP-DNA (ATCC 19698) zu erkennen. Amplifikate im 139 bp Bereich traten bei anderen Mykobakterien-Spezies (n = 13) nicht auf. Daher k?nnen die eingesetzten Primer (MAP523-542f/MAP661-642r) gegen?ber anderen Mykobakterien-Arten als MAP-spezifisch angesehen werden.

Nachdem die Spezifit?t der Primer (MAP523-542f/MAP661-642r) in der klassischen PCR anhand von Mykobakterien-Referenzst?mmen (n = 13) ?berpr?ft wurde, sollte die Spezifit?t der Sonde (MAP617-636p) in Kombination mit den Primern in der Echtzeit-PCR best?tigt werden. Als Negativkontrolle diente steriles, destilliertes Wasser. Reaktionsansatz sowie Reaktionsbedingungen der Echtzeit-PCR mit TaqMan Sonde auf dem LightCyclerTM 480 waren wie bereits oben definiert.

Die MAP-Spezifit?t der Primer (MAP523-542f/MAP661-642r) und der TaqMan Sonde (MAP617-636p) konnte auch gegen?ber Mykobakterien-Spezies hinreichend belegt werden. Ein Signal war nur bei dem Referenzstamm MAP (ATCC 19698) sichtbar. Die Reaktion der anderen Mykobakterienst?mme war vergleichbar mit der Negativkontrolle.

Die Nachweisgrenze bzw. Sensitivit?t der entwickelten TaqMan Echtzeit-PCR wurde mittels Titrationsreihen von 1 ng/?l bis 1 fg/?l Plasmid-DNA und MAP-DNA (ATCC 19698) aus Kultur ermittelt (5).

F?r die Herstellung von Plasmid-DNA wurden PCR-Produkte (139 bp) wie oben beschrieben kloniert und aufgereinigt. Anschlie?end wurde der Nukleins?uregehalt von Plasmid-DNA mittels NanoDrop? ermittelt und Verd?nnungsreihen von 1 ng/?l bis 1 fg/?l hergestellt.

Beim Einsatz von kulturell gewonnener MAP-DNA wurde eine Nachweisgrenze von 10 fg/?l erreicht. Das Genom von MAP besitzt eine L?nge von 4,7 106 bp (Cocito et al., 1994, Clinical Microbiology Reviews 7 (3), 328?345). Unter Verwendung der Avogadro?schen Konstante 6,022 1023 mol?1 und dem Molgewicht eines Basenpaares von 660 g ? mol?1 lie? sich berechnen, dass 5,15 fg einer Genomeinheit entsprechen (M?nster et al., 2011, Veterinary Microbiology 154, 197?201; M?nster et al., 2012). Nach dieser Berechnung lag die Nachweisgrenze mit 10 fg/?l bei ca. 2 Genomeinheiten.

Nach ?berpr?fung der Spezifit?t und Sensitivit?t wurde die Echtzeit-PCR auf ihre Effizienz getestet. Die Effizienz stellt ein Qualit?tsmerkmal einer quantitativen Echtzeit-PCR dar. Durch Gegen?berstellung der erzielten Cp-Werte und der MAP-DNA Konzentration wurde eine Standardkurve erstellt. Eine Standardkurve gibt die logarithmische Konzentration der isolierten DNA des Erregers in den jeweiligen Verd?nnungsstufen an. Die Steigung der Geraden betrug ?3,42 ? 0,23, der Fehler 0,04 ? 0,02 und die Effizienz lag bei 1,97 ? 0,08 (Auswertung mittels ?2nd Derivative Maximum? Methode). Damit erwies sich die lineare Standardkurve f?r eine quantitative Anwendung der TaqMan Echtzeit-PCR als geeignet.

Die Reproduzierbarkeit der Echtzeit-PCR wurde anhand von 9 Wiederholungen auf dem LightCyclerTM 480 ermittelt (3?3 L?ufe) und mittels ?2nd Derivative Maximum? sowie der ?Fit Point? Methode ausgewertet. Zur Visualisierung wurden der jeweilige Mittelwert sowie die Standardabweichung der ?Crossing points? (Cp), d.h. die Zyklenzahl, an denen die Fluoreszenz erstmalig signifikant ?ber die Hintergrund-Fluoreszenz ansteigt, berechnet und als S?ulendiagramm dargestellt (6 und 7).

Es konnte gezeigt werden, dass die Echtzeit-PCR reproduzierbare Ergebnisse lieferte. Alle neun Wiederholungen ergaben ?hnliche Mittelwerte der Cp-Werte, wobei die Standardabweichung statistisch niedrig war (maximal ? 0,73).

Auch eine Auswertung mittels ?Fit Point?-Methode erzielte reproduzierbare Ergebnisse mit gleichbleibender Sensitivit?t von 10 fg/?l.

Zur Pr?fung der Quantifizierbarkeit der TaqMan Echtzeit-PCR bzw. Veranschaulichung der ?bereinstimmung der kalkulierten mit den bekannten MAP-DNA Konzentration wurden diese berechnet und in Tabelle 3 gegen?bergestellt. DNA-Konzentrationen wurden sowohl mit der ?2nd Derivative Maximum?- als auch mit der ?Fit Point?-Methode berechnet. Bei letztem wurden manuell die ?Noise Band? auf 6,00 und der ?Treshold? auf 3,00 gesetzt. Tabelle 3: Quantifizierung von MAP-DNA aus Kultur in log10 Verd?nnungsstufen mittels TaqMan Echtzeit-PCR anhand von 9 Wiederholungen (3 ? 3 L?ufe). Die Auswertung erfolgte mittels ?2nd Derivative Maximum?- und ?Fit Point?-Methode.

2nd Derivative MaximumFit Point Probe Bekannte Konz.Berechnete Konz.Cp-WertBerechnete Konz.Cp-Wert 1 ng/?l10?99,17 ? 10?1022,79 ? 0,651,10 ? 10?921,00 ? 0,62100 pg/?l10?101,25 ? 10?1025,76 ? 0,071,33 ? 10?1023,94 ? 0,3410 pg/?l10?119,12 ? 10?1229,61 ? 0,387,62 ? 10?1227,88 ? 0,521 pg/?l10?128,19 ? 10?1332,82 ? 0,397,46 ? 10?1331,11 ? 0,54100 fg/?l10?131,29 ? 10?1335,18 ? 0,361,14 ? 10?1333,73 ? 0,3510 fg/?l10?141,05 ? 10?1437,61 ? 0,731,26 ? 10?1436,80 ? 0,941 fg/?l10?15---- NTC -----

?hnliche Werte der bekannten und berechneten DNA-Konzentrationen zeigten eine grunds?tzliche Quantifizierbarkeit von MAP-DNA mittels TaqMan Echtzeit-PCR. Auch als die Reaktionsans?tze der Verd?nnungsreihe von MAP-DNA mittels ?Fit Point?-Methode (?Noise Band? 6,00; ?Treshold? 3,00) ausgewertet wurden, wurden bei gleich bleibender Sensitivit?t die Ergebnisse der berechneten DNA-Konzentrationen nicht verf?lscht.

Die Stabilit?t bzw. Sensitivit?t einer PCR kann unter Feldbedingungen beeinflusst werden, wenn DNA aus Kot oder Gewebe extrahiert wird. Die m?gliche inhibierende Wirkung wurde mit Hilfe von Plasmid-DNA Verd?nnungsreihen (1 ng/?l bis 1 fg/?l), welche mit DNA aus negativem Kot versetzt wurden, ausgeschlossen (8).

Auch als die Reaktionsans?tze der Verd?nnungsreihe von Plasmid-DNA mit DNA aus MAP-negativem Kot hinterlegt wurden, wurde bei gleich bleibender Sensitivit?t das Ergebnis nicht verf?lscht. F?r die Veranschaulichung der ?bereinstimmung der kalkulierten mit den bekannten MAP-DNA Konzentrationen wurde diese berechnet und in Tabelle 4 gegen?bergestellt. Tabelle 4: Berechnete Konzentrationen und ermittelte Cp-Werte von Plasmid-DNA in log10 Verd?nnungsstufen (1 ng/?l bis 1 fg/?l) mittels TaqMan Echtzeit-PCR.

H2OKot-DNA Probe Bekannte Konz.Berechnete Konz.Crossing PointBerechnete Konz.Crossing Point1 ng/?l10?99,63 ? 10?1011,61 ? 0,079,97 ? 10?1013,53 ? 0,12100pg/?l10?101,08 ? 10?1015,27 ? 0,221,05 ? 10?1016,88 ? 0,0210 pg/?l10?11 9,67 ? 10?1219,22 ? 0,119,42 ? 10?1220,47 ? 0,141 pg/?l10?127,51 ? 10?1323,33 ? 0,249,89 ? 10?1323,83 ? 0,03100 fg/?l10?139,00 ? 10?1426,63 ? 0,151,03 ? 10?1327,20 ? 0,0710 fg/?l10?141,14 ? 10?1429,75 ? 0,069,83 ? 10?1530,13 ? 0,171 fg/?l10?159,85 ? 10?1633,33 ? 0,071,01 ? 10?1532,34 ? 0,03 NTC -----

Trotz der Hinterlegung mit DNA aus MAP-negativem Kot sind keine gravierenden Verschiebungen der Werte erkennbar. ?hnliche Werte der bekannten und berechneten DNA-Konzentrationen zeigen eine grunds?tzliche Einsetzbarkeit der TaqMan Echtzeit-PCR zur Quantifizierung von MAP-DNA unabh?ngig von der Matrix Kot.

F?r die vielseitige Anwendbarkeit der Echtzeit-PCR in der Routinediagnostik sowie in der Forschung muss der Nachweis von MAP-DNA in unterschiedlichen Matrices gew?hrleistet sein. Um den universellen Einsatz zu belegen, wurden aus dem Archiv der Routinediagnostik entnommen und bereits in der ?semi-nested?-PCR positiv getestete Proben zweimal auf dem LightCyclerTM 480 gepr?ft. Kot-, Milch-, Sperma-, Blut-, Gewebe- und Umweltproben wurden ausgew?hlt (9).

MAP-DNA konnte in allen Matrices sicher in den beiden L?ufen nachgewiesen werden. In Tabelle 5 sind die Cp-Werte der beiden L?ufe sowie Mittelwert und Standardabweichung dargestellt. Tabelle 5: Ermittelte Cp-Werte der verschiedenen Matrices auf dem LightCyclerTM 480 mit TaqMan Sonde.

KotMilchSpermaBlutGewebeUmweltLauf 125,0733,5327,8330,0033,2629,33Lauf 2 26,2833,3427,8529,9731,8829,30 MW
STBW
25,68 ?
0,86
33,44 ?
0,13
27,84 ?
0,01
29,99 ?
0,02
32,57 ?
0,98
29,32 ?
0,02

Die getesteten Kot-, Milch-, Sperma-, Blut-, Gewebe- und Umweltproben gaben ein eindeutiges fluoreszierendes Signal mit Cp-Werten zwischen 25,07 und 33,53. Das Ergebnis war reproduzierbar mit Standardabweichungen von 0,02 bis 0,98.

F?r den Einsatz der Echtzeit-PCR zum Nachweis von Paratuberkulose bei Wiederk?uern k?nnen auch Kontrollsysteme f?r die Amplifikation (z.B. HEX-Kanal) bzw. Extraktion (z.B. Cy5-Kanal) eingesetzt werden, die ?ber andere Label oder Marker unabh?ngig detektiert werden k?nnen. Dabei kann der Nachweis einer erfolgreichen Nukleins?ure-Extraktion z.B. ?ber eine Amplifikation des Zielgens ?-Aktin erfolgen. Dem Fachmann sind weitere Kontrollsysteme f?r die Amplifikation bzw. Extraktion bekannt.

Das endg?ltige Protokoll der MAP TaqMan Echtzeit-PCR lautet wie folgt:

95 ?C 10 min95 ?C
60 ?C
15 sec
30 sec
40 Zyklen
72 ?C 35 sec

Die dem Archiv entnommenen Proben gaben auch bei der Analyse mit einem Kontrollsystem f?r die Amplifikation und Extraktion im FAM-Kanal (465?510 nm) ein reproduzierbares eindeutiges fluoreszierendes Signal mit durchschnittlichen Cp-Werten zwischen 23,58 und 33,29 sowie Standardabweichungen von 0,02 bis 0,98.

Der beschriebene Test wurde mit 13 Rindern, die als positiv auf MAP getestet waren, evaluiert. Dazu wurde DNA aus den Kotproben extrahiert und mit der beschriebenen Echtzeit-PCR auf MAP getestet. Hier zeigte sich, dass der Test MAP in Kotproben nachweisen konnte. Schlie?lich wurden zur Best?tigung der Robustheit des Testes Organproben aus verschiedenen Darmbereichen zwei K?he getestet. Wie aus den Tabellen unten zu erkennen, ist der erfindungsgem??e Test zum Nachweis der MAP geeignet. Tabelle 7: Quantitative Anwendung der IS900 TaqMan Echtzeit-PCR zum Nachweis von MAP in Gewebeproben von zwei an Paratuberkulose erkrankten K?hen. Darstellung der Cp-Werte dreimal gemessen im FAM-Kanal (465?510 nm).

TierProbeFAM-Kanal
(465-510 nm)
Tier A Duodenum32,68 ? 0,21Jejunum28,00 ? 0,12Ileum27,09 ? 0,08Caecum25,06 ? 0,04Ln caecalis33,00 ? 0,23Tier B Duodenum33,79 ? 0,69Jejunum34,33 ? 0,61Ileum25,52 ? 0,03Caecum24,53 ? 0,03Ln caecalis28,86 ? 0,11

Alle Proben zeigten eine Amplifikationskurve im FAM-Kanal mit Cp-Werten von 24,53 bis 34,33 und Standardabweichungen von 0,03 bis 0,69. F?r eine quantitative Auswertung wurden, wie bereits oben beschrieben, DNA-Konzentration sowie MAP-Genomeinheiten pro Gramm Gewebe berechnet (Tabelle 8) und graphisch dargestellt (10). Tabelle 8: Quantitative Anwendung der IS900 TaqMan Echtzeit-PCR zum Nachweis von MAP in Gewebeproben zweier an Paratuberkulose erkrankter K?hen. Zur Quantifizierung von MAP in Gewebe wurden die DNA-Konzentration sowie die Zahl der Genomeinheiten pro Gramm Gewebe berechnet.

TierProbeDNA-KonzentrationMAP/g GewebeTier ADuodenum7,99 ? 10?146,21 ? 103Jejunum4,04 ? 10?123,14 ? 105Ileum8,13 ? 10?126,32 ? 105Caecum3,57 ? 10?112,77 ? 106Ln caecalis5,96 ? 10?144,63 ? 103Tier B Duodenum3,27 ? 10?142,54 ? 103Jejunum1,91 ? 10?141,48 ? 103Ileum2,57 ? 10?112,00 ? 106Caecum5,17 ? 10?114,02 ? 106Ln caecalis2,05 ? 10?121,59 ? 105

Kurze Beschreibung der Figuren

1: Graphische Darstellung der verwendeten Primer (MAP523-542f/MAP661-642r) sowie Patente der IS900.

2: Spezifit?ts-Abkl?rung der Primer (MAP523-542f/MAP661-642r) mit nicht-Mykobakterienspezies. Dazu wurden amplifizierte PCR-Produkte mittels Gelektrophorese (1,5% Agarosegel) aufgetrennt.

3: Spezifit?tsnachweis der TaqMan Echtzeit-PCR auf dem Light CyclerTM 480 anhand von Referenzst?mmen (n = 14).

4: Spezifit?ts-Abkl?rung der Primer (MAP523-542f/MAP661-642r) mit anderen Mykobakterien-Arten. Dazu wurden amplifizierte PCR-Produkte mittels Gelektrophorese (1,5% Agarosegel) aufgetrennt.

5: Sensitivit?tsnachweis der Echtzeit-PCR anhand von ATCC 19698 MAP-DNA. A: 1 ng/?l, B: 100 pg/?l, C: 10 pg/?l, D: 1 pg/?l, E: 100 fg/?l, F: 10 fg/?l, G: 1 fg/?l, NTC: Steriles Wasser.

6: Reproduzierbarkeit der TaqMan Echtzeit-PCR anhand von 9 (3 ? 3 L?ufe) Wiederholungen (Effizienz = 1,97 ? 0,08; Fehler = 0,04 ? 0,02). Die Auswertung erfolgte mittels ?2nd Derivative Maximum? Methode.

7: Reproduzierbarkeit der TaqMan Echtzeit-PCR anhand von 9 Wiederholungen (3 ? 3 L?ufe) (Effizienz = 2,07 ? 0,09; Fehler = 0,18 ? 0,03). Die Auswertung erfolgte mittels ?Fit Point?-Methode.

8: Graphische Darstellung der Amplifikationskurven der Plasmid-DNA Verd?nnungsreihen (1 ng/?l bis 1 fg/?l) hinterlegt mit H2O (A) und Kot-DNA (B) auf dem LightCyclerTM 480 mit TaqMan Sonde. Kurven v.l.n.r.: 1 ng/?l, 100 pg/?l, 10 pg/?l, 1 pg/?l, 100 fg/?l, 10 fg/?l, 1 fg/?l, Steriles Wasser (NTC).

9: Graphische Darstellung der Amplifikationskurven zum Nachweis von MAP-DNA aus verschiedenen Matrices auf dem LightCyclerTM 480 mit TaqMan Sonde.

10: Quantitative Anwendung der IS900 TaqMan Echtzeit-PCR zum Nachweis von MAP in Gewebeproben. Gegen?berstellung von Tier A und Tier B. Die Balken stellen den Mittelwert sowie die Standardabweichung (3 Wiederholungen) der berechneten MAP-Konzentration in verschiedenen Geweben dar.

ZITATE ENTHALTEN IN DER BESCHREIBUNG

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Zitierte Patentliteratur

  • DE 102007015775 A1 [0007]
  • EP 2009118 A2 [0007]

Zitierte Nicht-Patentliteratur

  • IS900-Region [0001]
  • IS900 [0005]
  • IS900 [0006]
  • IS900 [0007]
  • IS900-Region [0011]
  • IS900-Region [0016]
  • IS900-Region [0029]
  • IS900 [0035]
  • IS900-Sequenzen [0042]
  • Shin et al., 2010, Journal of Clinical Microbiology 48 (11), 4057?4062 [0045]
  • Cocito et al., 1994, Clinical Microbiology Reviews 7 (3), 328?345 [0052]
  • M?nster et al., 2011, Veterinary Microbiology 154, 197?201; M?nster et al., 2012 [0052]
  • IS900 [0070]
  • IS900 [0079]